Анестезия для морской свинки

Легче всего если у вас ингаляционный наркоз есть, с минимальной, или без премедикации. Морские свинки могут самомтоятельно себя травмировать, после внутримышечных иньекций анестетиков, так что желательно избегать таковых. Пишу на скорую руку, поэтому не могу дать подробностей, я просто впечатаю часть конспекта, который нам давали по анастезии морских свинок(извините, но на английском языке)
Если не возражаете против английского, то могу завтра выложить полный конспект нашего анестезиолога, про анастезию грызунов и кроликов.

Guinea Pigs and Chinchillas
• difficult to anesthetize safely
• easily stressed
• very difficult to intubate
• variable responses to injectable anesthetic agents
• higher incidence of post-operative complications
• IM injections of anesthetic agents have been reported to cause self-mutilation
• pre-anesthetic medication may be helpful if the handler is competent and the injection can be performed atraumatically:
— atropine 0.05 mg/kg IM is indicated to reduce copious salivary secretions
— midazolam 0.3 — 1.0 mg/kg plus butorphanol 0.4 — 0.8 mg/kg combined IM
— midazolam 0.3 — 1.0 mg/kg plus buprenorphine 0.01 — 0.03 mg/kg combined IM
Anesthetic induction:
— in some situations, the least stressful induction method may be to place the
unpremedicated patient in a small induction chamber for delivery of
isoflurane (or sevoflurane); once the patient is relaxed, the induction can be
completed with a face mask .
— if not already administered, an opioid analgesic agent (see above) should be
given at this time
Anesthetic maintenance:
— anatomical considerations make intubation very difficult, so oxygen± inhalant are typically delivered via a face mask .
— inhalant agents (most commonly isoflurane) are preferred over injectable
agents for maintenance of anesthesia

Мы так же используем ингаляционный наркоз. Если свинка небольшая, то смачиваем ватку эфиром и вместе со свинкой под колпак. Как успокаивается, вынимаем и добавляем уже по мере необходимости. Надо спросить у Пламена Паскова использовал ли он золетил для свиней (морских)?

Анестезия экзотических животных

Особенности наркоза у грызунов и рептилий

Анестезия грызунов и экзотических млекопитающих животных (хорьки, хомяки, мыши, крысы, кролики, шиншиллы, морские свинки), рептилий (змеи, ящерицы, черепахи), птиц и амфибий используется для проведения многих диагностических и хирургических процедур.

Проведение анестезии у таких пациентов имеет свои особенности и предполагает наличие специального опыта у врача-анестезиолога.

Все общие принципы анестезии и предоперационной подготовки кошек и собак справедливы и для экзотических животных. Обязательно проведение общего клинического обследования, оценка анестезиологического риска, дополнительное обследование функций органов и систем.

Особую сложность в проведении общей анестезии представляют собой рептилии, птицы и амфибии. Принципиальным у этих животных является разница в скорости обмена веществ и анатомо-физиологические особенности. Это определяет различия в предоперационной подготовке, выборе препаратов для анестезии и послеоперационном наблюдении.

Предоперационная подготовка

Подготовка перед операцией предполагает соблюдение голодной диеты перед проведением анестезии. Это необходимо для предотвращения регургитации (отрыгивания пищи) и дальнейшей аспирации содержимого желудка (то есть проникновения остатков пищи в дыхательные пути).

• У грызунов и птиц период голодной диеты должен составлять не более трех часов ввиду их быстрого обмена веществ.
• У рептилий опасность аспирации маловероятна из-за особенностей строения голосовой щели, но тем не менее некоторые плановые исследования проводятся с соблюдением голодной диеты в течение 3 суток.

В некоторых случаях животным требуется предварительная инфузионная терапия, то есть капельницы, включающие в себя растворы электролитов и растворы декстрозы, активное согревание.

Общая анестезия

Инъекционная анестезия

У экзотических животных хорошо зарекомендовали себя инъекционные препараты, используемые у кошек и собак, а именно Пропофол, Золетил и его аналоги. Чаще используется Пропофол для хорьков и мелких млекопитающих.

Пропофол хорошо подходит для индукции наркоза у игуан, при внутривенном введении обеспечивает кратковременную анестезию, достаточную для проведения небольших манипуляций и интубации. Однако следует помнить, что Пропофол не обладает обезболивающим эффектом.

Газовые анестетики

При проведении длительных процедур имеет смысл поддерживать анестезию с помощью ингаляционных анестетиков, которые поступают в легкие посредствам маски или интубационной трубки.

У змей и варанов голосовая щель находится близко в ротовой полости и интубация бывает возможна даже у бодрствующих животных. У большинства ящериц и черепах интубация обычно требует предварительной седации с использованием Золетила.

Основным газовым анестетиком является Изофлюран, который обеспечивает быстрое введение в анестезию и более быстрое восстановление по сравнению с другими анестетиками. Объем подачи рассчитывается в МАКах.

Минимальная альвеолярная концентрация (МАК) — это концентрация анестетика в альвеолах, которая определяется процентным соотношением газов и обеспечивает наркозный сон. МАК изофлюрана для анестезии:

• рептилий — составляет 1,5 — 2,1%;
• кроликов — 2,05%;
• у птиц — 1,34%.

Важно контролировать необходимую концентрацию в дыхательном контуре, чтобы избежать передозировки анестетика и, как следствие, остановки дыхания и других опасных осложнений анестезии. В наших условиях есть надежный способ мониторинга концентрации газовой смеси с помощью специального монитора, который при помощи магистрали соединяется с контуром и отображает на дисплее изменения концентрации газообразного анестетика.

У рептилий из-за отсутствия диафрагмы под общей анестезией может возникать остановка дыхания, в связи с чем необходимо проведение искусственной вентиляции легких для поддержания постоянной глубины анестезии. Стимулом для восстановления дыхания у рептилий является снижение концентрации кислорода в контуре, тогда как у млекопитающих – увеличение концентрации углекислого газа. Таким образом, когда процедура заканчивается, прекращается подача кислорода и продолжается вентиляция с использованием только комнатного воздуха.

Постоперационная терапия

В послеоперационном периоде основными задачами являются:

• поддержание температуры пациента и контроль гипотермии;
• восстановление водно-электролитного баланса, то есть введение жидкостей, так как обезвоживание пациента снижает скорость восстановления и выведения анестетика из организма.

Мониторинг анестезии

Проведение анестезии у экзотических животных является специфичной и необходимой процедурой, имеющей свои особенности ввиду физиологических различий у пациентов. Объективный мониторинг снижает риски осложнений.

Долгое время исследование электрокардиограммы (ЭКГ) широко использовалось и обеспечивало надежную индикацию частоты пульса у животного. Однако использование ЭКГ не изучено у всех видов животных и неэффективно у мелких животных и рептилий по причине либо высокой частоты сердечных сокращений, либо небольшого электрического потенциала.

Ультразвуковое допплеровское исследование используется для оценки кровотока и давления в сосудах за счет отражения ультразвуковых волн от красных кровяных клеток – эритроцитов. Эта методика считается очень точной, но не в состоянии отслеживать многие физиологические изменения в состоянии пациента, поэтому не находит широкого распространения.

Обыкновенный или пищеводный стетоскоп является хорошим средством мониторинга у всех животных, кроме рептилий.

Хорошо зарекомендовала себя в качестве метода мониторинга анестезии пульсоксиметрия. Это неинвазивный метод определения степени насыщения крови кислородом. В основе метода лежит спектрофотометрический способ оценки количества гемоглобина в крови. Пульсоксиметр имеет периферический датчик, в котором находится источник света двух длин волн — «красный» и «инфракрасный». Степень поглощения зависит от того, насколько гемоглобин крови насыщен кислородом (каждая молекула гемоглобина способна присоединить максимум 4 молекулы кислорода). Фотодетектором регистрируются изменения цвета крови в зависимости от этого показателя. Усреднённое наполнение отображается монитором пульсоксиметра.

В любом случае ни один аппаратный способ мониторинга не заменит постоянного контроля анестезиолога активности рефлексов, наблюдения за дыханием и сердечной деятельностью, термометрией.

В отношении рептилий актуально также следить за температурой воздуха в помещении, так как он влияет на температуру тела пациента. У разных видов диапазон возможных температур может варьироваться, но во всех случаях температурный порог не должен опускаться ниже 24 градусов.

Анестезия в ветцентре доктора Воронцова

Применение анестезии может понадобиться как для хирургического вмешательства, так и для проведения некоторых диагностических процедур. Проконсультируйтесь с врачом-анестезиологом в нашем центре. У нас есть неинфекционный стационар для животных, в котором вы можете оставить своего питомца на время операции и процедур, а также послеоперационного ухода.

Мы находимся в Москве, недалеко от пересечения МКАД и Каширского шоссе. Точный адрес: Совхоз им. Ленина, дом 3а (смотрите схему проезда), метро Домодедовская, Зябликово, Орехово, Красногвардейская.

Анестезия для экзотических животных

Введение

С каждым днем люди начинают приобретать все больше и больше различных экзотических животных. Именно поэтому будет актуально рассказать про анестезию для экзотических животных.

За последние 30 лет активного развития ветеринарии экзотических животных для анестезии пресмыкающихся были предприняты попытки использования большинства препаратов, применяемых в медицинской и ветеринарной анестезиологии. Накопленный опыт свидетельствует о том, что целый ряд общепринятых средств анальгезии и седации для теплокровных не оказывает действия на рептилий, а дозы эффективных лекарств и динамика их действия значительно отличаются у представителей различных систематических групп.

В статье будет рассмотрено различное влияние препаратов наркоза на примере таких животных, как:

Проведение анестезии у таких пациентов имеет свои особенности и предполагает наличие специального опыта у врача-анестезиолога.

Общие принципы анестезии и предоперационной подготовки кошек и собак справедливы и для экзотических животных. Обязательно проведение общего клинического обследования, оценка анестезиологического риска, дополнительное обследование функций органов и систем.

Особую сложность в проведении общей анестезии представляют собой рептилии, птицы, амфибии. Принципиальным у этих животных является разница в скорости обмена веществ и анатомо-физиологические особенности, что определяет различия в предоперационной подготовке, выборе препаратов для анестезии и послеоперационном наблюдении.

Наркоз для рептилий

Анатомо-физиологические особенности рептилий не позволяют напрямую использовать методы иммобилизации и наркоза, широко применяемые для теплокровных. Основную сложность для анестезиолога представляет относительно медленный обмен веществ у рептилий по сравнению с млекопитающими. При этом увеличивается период индукции препаратов при любом способе введения, значительно (до нескольких суток) удлиняется время остаточного действия и в целом резко сужается широта терапевтического действия средств для наркоза, а дозы, необходимые для достижения надежной седации, вплотную приближаются к токсическим.

Например, доза кетамина, необходимая для надежного хирургического наркоза черепахи, составляет 100 мг на кг, а уже 110 мг на кг вызывают необратимую остановку дыхания.

Дозы кетамина для змей – 30-60 мг/кг, для ящериц – 40-60 мг/кг, для крокодилов – 10- 70 мг/кг, черепахам кетамин применяют в дозах 50-100 мг/кг, для осмотра бывает достаточно введения 35 мг/кг.

Для хамелеонов обычно используют газовый наркоз и такой ингаляционный анестетик, как изофлуран.

Первым такой метод анестезии для хамелеонов предложил использовать известный ветеринар-герпетолог Васильев Дмитрий Борисович. Для наркоза используется целая система, состоящая из мешка Амбу, переходника, зажима и интубационной трубки. Необходимо смочить ватку изофлураном и поместить ее в переходник. Определенной дозировки нет, но примерно расходуется около 1 мл препарата. Кетамин же используется как мононаркоз.

Ингаляционный наркоз для хамелеона. В переходнике находится вата, смоченная изофлураном.

Говоря о препаратах, применимых для премедикации рептилий, следует отметить фенотиазины, в особенности, хлорпромазин (аминазин) и ацепромазин (ветранквил), которые при введении внутримышечно за 40-60 мин до наркоза в дозах 0,1-0,5 мг/кг позволяют в 2-3 раза снизить дозы барбитуратов или кетамина. Премедикация фенотиазинами достоверно облегчает и ускоряет восстановительный период.

Атропина сульфат с этой же целью применяют, по разным данным, в дозах от 0,01 до 0,04 мг/кг.

Если использовать сочетание таких препаратов, как золетил + рометар, которое часто используют у собак и кошек, то для большинства рептилий, в частности, хамелеона высока вероятность летального исхода, так как дозировка подобного сочетания для рептилий до сих пор не рассчитана, а выход из наркоза может занять до 3-х суток. По этой причине такой наркоз для рептилий неэффективен. Его используют лишь в крайних случаях, но с огромным риском летального исхода.

В последнее время для наркоза рептилий с успехом используется пропофол (Diprivan, Rapidovet), вводимый внутривенно или внутрикостно в дозе 5 мг/кг. Для продления наркоза свыше 30 мин пропофол добавляют со скоростью 0,5 мг/кг в минуту. Короткий латентный период, легкая управляемость и быстрый выход из наркоза являются привлекательными сторонами этого препарата. Рептилии на нём спят, также отмечено обезболивающее действие.

Для наркоза змей используют золетил, однако такой наркоз невозможно нормально контролировать и, в конечном итоге, может быть летальный исход. Также для змей можно использовать изофлуран, но при его использовании змеи проявляют очень большую агрессию в стадию возбуждения. Если змея небольшая (менее 65-75 см), то ее можно удержать. Рекомендуют перед тем, как пустить газ, применять в качестве седации пропофол, который расслабляет мышцы змеи.

Наркоз для птиц

Для птиц используется газ-мононаркоз.

Ингаляционная анестезия птиц

Ингаляционная анестезия птиц по многим параметрам предпочтительнее инъекционной. Ею можно управлять, она имеет большую терапевтическую широту, обеспечивает быстрое введение пациента в наркоз и безпроблемный выход из него. К преимуществам можно отнести и то, что продолжительность наркоза можно регулировать в зависимости от специфики операции, а также то, что эффект может быть мгновенно прекращен.

Всё выше перечисленное в особенности касается изофлурана.

Изофлуран – идеальный анестетик для птиц, поскольку он:

• имеет высокий терапевтический индекс,
• быстро вводится и выводится из крови,
• индуцирует минимальные физиологические изменения,
• обеспечивает адекватное обездвиживание для большинства процедур,
• безопасен для пациентов в критическом состоянии,
• малотоксичен.

Использовать изофлуран следует по следующей схеме: начало – 3-4% V масочно, далее интубация и поддержание наркоза (на 0,75-4,5 – индивидуально для каждой птицы, зависит от вида, возраста и т. д.). Перед дачей наркоза птице следует дать подышать кислородом, а после – ничего. Премедикация нужна в зависимости от состояния, может вообще не понадобится.

Инъекционная анестезия птиц

Инъекционная анестезия птиц не так удобна, как ингаляционная.

В основном инъекционно используют комбинацию кетамина и ксилазина, реже применяется кетамин и диазепам. Барбитураты не рекомендуются в ветеринарной медицине птиц вследствие низкого уровня их безопасности, длительной реверсии и строго внутривенного способа введения для предотвращения периваскулярных повреждений и обеспечения соответствующего уровня анестезии.

В нашей практике наилучшие результаты получены последовательным введением сначала диазепама в дозах 0,5-1,0 мг/кг, а через 10-15 минут – кетамина (5-20 мг/кг) внутримышечно, что обеспечивает минимальный риск судорожных реакций при достаточно глубокой анестезии. После операций обязательно назначают обезболивающие.

Местный наркоз для птиц (на примере удаления крыла грачу)

Для местного наркоза можно использовать новокаиновую (0,5%) блокаду.

В конкретном случае по удалению крыла грачу после операции мы использовали антибиотики (цефтриаксон) в течение 5 дней 2 раза в день (50мг/кг), так как был открытый инфицированный перелом.

Однако стоит отметить, что при местной анестезии сохраняется спонтанное дыхание, поэтому, как уже упоминалось выше, лучше всего для наркоза птиц использовать газ.

Наркоз для грызунов (на примере самца мыши, вес – 22 г)

В конкретном случае мышь поступила на плановую операцию по кастрации.

Перед наркозом провели осмотр. Премедикация не проводилась.

Газовый наркоз для мыши.

Сначала мышь положили в кислородную камеру на 5 минут. Далее пустили газ (изофлуран) в индукционной камере (маска для газового наркоза). Наркоз – на 4% V, скорость подачи — 1,5 л/мин.; поддержание наркоза – на 0,5% V, скорость потока — 0,4 л/мин.

Выход из наркоза происходил на обычном воздухе, без дополнительной подачи кислорода. Обезболивание, по состоянию, проводится в течение 2-4 дней с использованием кетофена (0,02 мл).

Золетил использовать нельзя, поскольку у 80% пациентов через 2-3 недели развивается язва роговицы. Пропофол используется как вводный наркоз, либо в сопровождении с другим (разводят физраствором, дозировка — 20-40 мг/кг).

Заключение

Проведение анестезии у экзотических животных является специфичной и необходимой процедурой, имеющей свои особенности ввиду физиологических различий у пациентов. Объективный мониторинг во время этой процедуры снижает риски осложнений.

Автор статьи: Михайлюк Вероника Станиславовна, личный ассистент Гиль В. Ю., интерн.

Другие статьи:

Стоматит у игуан

Автор статьи: Михайлюк Вероника Станиславовна, личный ассистент Гиль В. Ю., интерн.

Как правильно подготовить животное к приёму гастроэнтеролога

Автор статьи: Пущина Людмила Анатольевна, ветеринарный врач, гастроэнтеролог, терапевт.

О самолечении животных

Автор статьи: Якин Дмитрий Владимирович, ветеринарный врач, хирург, рентгенолог.